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dc.contributor.author
Leles, Renan N.  
dc.contributor.author
Lopez Lastra, Claudia Cristina  
dc.contributor.author
García, Juan J.  
dc.contributor.author
Fernandes, Everton K. K.  
dc.contributor.author
Luz, Christian  
dc.date.available
2017-01-06T19:22:47Z  
dc.date.issued
2013-06  
dc.identifier.citation
Leles, Renan N.; Lopez Lastra, Claudia Cristina; García, Juan J.; Fernandes, Everton K. K.; Luz, Christian; A simple method for the detection of Leptolegnia chapmanii from infected Aedes Aegypti larvae; Natl Research Council Canada-n R C Research Press; Canadian Journal Of Microbiology; 59; 6; 6-2013; 425-429  
dc.identifier.issn
0008-4166  
dc.identifier.uri
http://hdl.handle.net/11336/10939  
dc.description.abstract
Significant progress in developing Leptolegnia chapmanii as a biological control agent against mosquitoes will be accelerated by improved and simpler methods to detect and to isolate this virulent and rapidly lethal watermold from fieldcollected mosquito larvae. To date, however, this oomycete has remained understudied and little used. This study presents a simplified method to detect Leptolegnia in infected Aedes aegypti larvae. The development of L. chapmanii inside mosquitoes is easily monitored when pathogen-treated larvae are quasi-immobilized for an initial 48 h in the water film on plates of water agar amended with antibiotic (chloramphenicol, 0.5–1 g/L) and fungicide (thiabendazole, 4–8 g/L) and then transferred to a larger volume of water for an additional 48 h. Surprisingly, chloramphenicol stimulated oosporogenesis by L. chapmanii. The method permits processing of large numbers of A. aegypti and other culicid larvae and is useful for both obtaining new strains and also monitoring the efficacy of L. chapmanii during field tests.  
dc.description.abstract
Des méthodes de détection et d’isolation de Leptolegnia chapmanii améliorées et simplifiées, a` partir de larves de moustiques prélevées sur le terrain, pourraient fortement accélérer l’élaboration d’agents de lutte biologique s’attaquant aux moustiques et s’appuyant sur ce oomycète virulent et rapidement mortel. Or, a` ce jour, cet oomycète demeure mal étudié et sous utilisé. La présente étude illustre une méthode simplifiée permettant la détection de Leptolegnia dans des larves de Aedes aegypti. Le développement de L. chapmanii a` l’intérieur des moustiques peut être facilement observé en continu lorsque les larves traitées avec le pathogène sont presque immobilisées pendant une durée initiale de 48 h dans la pellicule d’eau de géloses d’agar aqueux auxquelles on a ajouté un antibiotique (chloramphénicol a` 0,5–1 g/L) et un fongicide (thiabendazole a` 4–8 g/L), pour ensuite être transférées dans un plus grand volume d’eau pour un autre 48 h. Fait surprenant, le chloramphénicol stimule l’oosporogénèse chez L. chapmanii. La méthode permet d’examiner un grand nombre de A. aegypti et d’autre larves de culicidés et facilite l’identification de nouvelles souches et la surveillance de l’efficacité de L. chapmanii lors d’essais sur le terrain.  
dc.format
application/pdf  
dc.language.iso
eng  
dc.publisher
Natl Research Council Canada-n R C Research Press  
dc.rights
info:eu-repo/semantics/openAccess  
dc.rights.uri
https://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/2.5/ar/  
dc.subject
Watermolds  
dc.subject
Mosquitoes  
dc.subject
Stramenipila  
dc.subject
Leptolegnia  
dc.subject
Saprolegniales  
dc.subject.classification
Biología Celular, Microbiología  
dc.subject.classification
Ciencias Biológicas  
dc.subject.classification
CIENCIAS NATURALES Y EXACTAS  
dc.title
A simple method for the detection of Leptolegnia chapmanii from infected Aedes Aegypti larvae  
dc.type
info:eu-repo/semantics/article  
dc.type
info:ar-repo/semantics/artículo  
dc.type
info:eu-repo/semantics/publishedVersion  
dc.date.updated
2016-12-12T14:12:58Z  
dc.identifier.eissn
1480-3275  
dc.journal.volume
59  
dc.journal.number
6  
dc.journal.pagination
425-429  
dc.journal.pais
Canadá  
dc.journal.ciudad
Ontario  
dc.description.fil
Fil: Leles, Renan N.. Universidade Federal de Goias; Brasil. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico La Plata. Centro de Estudios Parasitológicos y de Vectores (i); Argentina. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Naturales y Museo; Argentina  
dc.description.fil
Fil: Lopez Lastra, Claudia Cristina. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico La Plata. Centro de Estudios Parasitológicos y de Vectores (i); Argentina. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Naturales y Museo; Argentina  
dc.description.fil
Fil: García, Juan J.. Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas. Centro Científico Tecnológico La Plata. Centro de Estudios Parasitológicos y de Vectores (i); Argentina. Universidad Nacional de La Plata. Facultad de Ciencias Naturales y Museo; Argentina  
dc.description.fil
Fil: Fernandes, Everton K. K.. Universidade Federal de Goias; Brasil  
dc.description.fil
Fil: Luz, Christian. Universidade Federal de Goias; Brasil  
dc.journal.title
Canadian Journal Of Microbiology  
dc.relation.alternativeid
info:eu-repo/semantics/altIdentifier/doi/http://dx.doi.org/10.1139/cjm-2012-0703  
dc.relation.alternativeid
info:eu-repo/semantics/altIdentifier/url/http://www.nrcresearchpress.com/doi/abs/10.1139/cjm-2012-0703#.WG66KPnhCJA